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I campi elettromagnetici pulsati a bassa frequenza migliorano significativamente il tempo di chiusura e la proliferazione dei fibroblasti tendinei umani

I campi elettromagnetici pulsati a bassa frequenza migliorano significativamente il tempo di chiusura e la proliferazione dei fibroblasti tendinei umani

Eur J Med Ris.5 luglio 2014;19(1):37.  doi: 10.1186/2047-783X-19-37.


Claudine Seeliger , Karsten Falldorf , Jens Sachtleben , Martijn van Griensven 1

Affiliazione

  • 1Dipartimento di Chirurgia traumatologica, Chirurgia sperimentale traumatologica, Klinikum rechts der Isar, Università tecnica Monaco, Ismaninger Strasse 22, D-81675 Monaco di Baviera, Germania. vanGriensven@uchir.me.tum.de.

Astratto

Sfondo: La promozione del processo di guarigione in seguito a lesioni muscoloscheletriche comprende la segnalazione del fattore di crescita, la migrazione, la proliferazione e l'apoptosi delle cellule. Se questi processi potessero essere modulati, la guarigione del tessuto tendineo potrebbe essere notevolmente migliorata. Qui riportiamo l'uso del dispositivo Somagen™, certificato per uso medico secondo le leggi europee. Genera campi elettromagnetici pulsati a bassa frequenza che innescano effetti di natura non ancora determinata.

Metodi: Nelle colture di fibroblasti del tendine rotuleo è stato introdotto un raschiamento lineare di 1,5 cm di larghezza (N = 5 donatori). Il trattamento è stato effettuato ogni due giorni. Il regime è stato applicato tre volte in totale con 30 minuti comprendenti pacchetti di campi elettromagnetici pulsati con due frequenze fondamentali (10 minuti di 33 Hz, 20 minuti di 7,8 Hz). Le cellule di controllo sono rimaste non trattate. Tutti i campioni sono stati analizzati per il tempo di chiusura del gap, la proliferazione e l'apoptosi una settimana dopo l'induzione della ferita da raschiamento.

Risultati: il tempo medio per colmare il divario nelle cellule non trattate è stato di 5,05 ± 0,33 giorni e nelle cellule trattate sono stati necessari 3,35 ± 0,38 giorni (P <0,001). Per le colture cellulari con ferite da raschiamento, è stato trovato un valore medio per l'incorporazione di BrdU di OD = 0,70 ± 0,16. Considerando che i campioni trattati con campi elettromagnetici pulsati a bassa frequenza hanno mostrato OD = 1,58 ± 0,24 (P <0,001). Tuttavia, la percentuale di cellule apoptotiche non differiva tra i due gruppi.

Conclusioni: i nostri dati dimostrano che i campi elettromagnetici pulsati a bassa frequenza emessi dal dispositivo Somagen™ influenzano la guarigione delle ferite in vitro dei fibroblasti del tendine rotuleo e, quindi, possono aumentare il potenziale di guarigione della ferita.

Figura 1 Il dispositivo Somagen™ che emette campi elettromagnetici pulsati a bassa frequenza (PEMF). In questo lavoro è stato utilizzato uno specifico programma di 'guarigione delle ferite' della durata di 30 minuti. Il programma applicato consisteva in due pacchetti di segnali PEMF di 10 minuti a una frequenza fondamentale di 33 Hz e 20 minuti a 7,8 Hz.




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Figure 2 The use of low-frequency pulsed electromagnetic fields (PEMF) lead to a significantly lower time to closure. Scrape wound of patellar tendon fibroblasts caused by a cell scraper (A), magnification 60×. For the analysis of the time to closure, one part of the cells was treated with the Somagen™ device applying the ‘wound healing’ program (B). Nontreated cells were cultured under the same conditions without treatment with the Somagen™ device. Mean ± SD, ***P <0.001, (N = 5, n = 2) are indicated.


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Figure 3 The low-frequency pulsed electromagnetic fields (PEMF) did not affect the apoptotic rate but significantly increased the proliferation. Apoptosis level in patellar tendon fibroblasts in the scrape wound after 1 week (B). Apoptosis was measured using Annexin V-FITC and PI staining by flow cytometry. Proliferation measured using BrdU incorporation into patellar tendon fibroblasts in the scrape wound after 1 week (A). One part of the cells was treated with the low-frequency PEMF generated by the Somagen™ device applying the ‘wound healing’ program. Nontreated cells served as negative control. Mean ± SD, ***P <0.001, (N = 5, n = 2) are indicated.


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